【储存条件】 15-25℃保存，室温运输。
【产品简介】
本产品采用独特的基因组DNA清除/RNA吸附通用柱技术配合特殊试剂配方，适用于各种普通植物、多糖多酚植物和真菌的RNA提取；提取过程无需使用酚氯仿、β-巯基乙醇等有毒试剂，也无需耗时的醇类沉淀，即可高效去除基因组DNA、杂蛋白及其他杂质，提出高质量的RNA，可用于反转录PCR、荧光定量PCR、高通量测序建库等实验。
【产品组分】
【注意事项】 使用前必读
1. 所有离心步骤如未加说明，均可在常温进行。
2. 需要自备无水乙醇，首次使用试剂盒前，请参考瓶上标签，在漂洗液RW中加入指定量无水乙醇，并在瓶身及瓶盖做标记，混匀后方可使用。
3. 使用新鲜样本时，若不能及时提取，将样本立即置于液氮中，速冻后于-85至-65°C保存，并避免反复冻融；为了避免RNA的降解，样本的采集与保存应尽可能迅速。
4. 液氮研磨时，为防止样本融化，需及时补给液氮。
5. 样本从液氮中取出，需立即加入裂解液混合均匀，请勿将样本单独置于室温，样本融化或样本与裂解液混合不均匀都会导致RNA降解。
6. 裂解液FEA和去蛋白液RW1中含有刺激性化合物，操作时戴乳胶手套，避免沾染皮肤，眼睛和衣服。若沾染皮肤、眼睛时，要用大量清水或者生理盐水冲洗。
7. 经常更换新手套，并使用无RNase的塑料制品和枪头，避免RNase污染。
8. 本试剂盒可去除体系中大部分的DNA污染，纯化获得的RNA通常无需使用DNase I 处理即可用于下游实验操作。不同样本核酸含量相差大，如果下游实验对痕量DNA十分敏感，可以使用DNase I 进一步清除DNA污染。
【操作示例】
1. 液氮中研磨适量植物/真菌组织成细粉后，取50 mg-100 mg细粉转入1.5 mL离心管，立即加入600 μL裂解液FEA，剧烈涡旋振荡30秒，使样本与裂解液充分混合均匀。13,000 rpm离心5 min，立即进行后续操作。
注意：由于植物多样性非常丰富，而且同种植物的不同生长发育阶段和不同组织的RNA含量都不相同，请根据具体实验情况选择合适的植物材料的用量。
2. 取裂解物上清约500 μL至DNA清除/RNA吸附通用柱(已放入收集管中，以下简称 (通用柱) 中，13,000 rpm离心30秒，弃掉通用柱，保留收集管中的滤液 (RNA在滤液中)。
注意：上清体积可根据实际情况做出相应调整。
3. 向收集管中加入0.5倍滤液体积的无水乙醇 (约250 μL，根据上清实际情况调整)，振荡混匀15秒。
注意：若加醇后出现浑浊或有絮状物产生，属正常现象，可将混合液 (包括絮状物) 都加入通用柱中继续进行后续操作。
4. 立即将上述混合液转移至一个新的通用柱内（已放入收集管中），静置1分钟，13,000 rpm 离心30秒，弃滤液，将通用柱放回收集管。
注意：吸附柱容积为750 μL，若混合液超过该体积请分多次进行上柱。
5. 向通用柱中加入700 μL去蛋白液RW1，室温放置1分钟，13,000 rpm离心30秒，弃滤液。
6. 向通用柱中加入500 μL漂洗液RW（使用前请检查是否已加入无水乙醇），13,000 rpm离心30秒，弃滤液。
7. 重复步骤6一遍。
8. 将通用柱放入空收集管中，13,000 rpm 离心2分钟。
9. 将通用柱转入一个新的RNase free 1.5mL离心管中， 向吸附柱膜中央悬空滴加30-50 μL RNase-free H₂O，室温放置1分钟，13,000 rpm离心1分钟。
注意：洗脱体积越大，洗脱效率越高，如果需要RNA浓度较高，可以适当减少洗脱体积，但是最小体积最好不少于30 μL，体积过小降低RNA洗脱效率，减少RNA产量。
注意：以下步骤都可以帮助提高RNA产物浓度：
（1）RNase-free ddH2O于90℃预热；
（2）将第一次洗脱液重新加入吸附柱进行洗脱。
10. 提取的RNA可直接用于下游实验或-85至-65°C保存。
